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微生物基因編輯

簡要描述:微生物基因編輯是利用分子生物學技術對細菌、真菌、病毒等微生物的基因組進行定向改造,廣泛應用于基礎研究、工業生產和醫學治療

  • 更新時間:2025-06-26 17:27:13
  • 訪  問  量:14

詳細介紹

1. 微生物基因編輯常用基因編輯技術

A. CRISPR-Cas系統(最主流)

  • 工具組成

    • Cas蛋白:常用Cas9(化膿鏈球菌)、Cas12a(更小,適合緊湊基因組)。

    • sgRNA:引導Cas蛋白靶向特定DNA序列。

    • 修復模板(HDR):用于精確插入或替換基因。

  • 優勢:高效、多靶點編輯、適用于多種微生物。

  • 適用微生物:細菌(大腸桿菌、枯草芽孢桿菌)、真菌(酵母、絲狀真菌)、古菌。

B. 傳統同源重組(HR)

  • 原理:通過同源臂介導的DNA重組實現基因替換或敲除。

  • 適用場景:CRISPR效率低的微生物(如某些乳酸菌)。

  • 關鍵步驟:構建含同源臂的線性DNA片段,電轉化或接合轉移。

C. 其他工具

  • Base Editing(堿基編輯):無需DSB,直接轉換C→T或A→G(如CRISPR-Cas9-脫氨酶融合蛋白)。

  • Prime Editing:更精準的插入、缺失和點突變。

  • 轉座子/噬菌體整合:適用于無高效編輯工具的微生物(如某些放線菌)。


2. 微生物基因編輯實驗流程(以CRISPR-Cas9為例)

A. 設計階段

  1. 靶點選擇

    • 使用工具(如CRISPRko)設計sgRNA,避免脫靶。

    • 目標序列要求:NGG PAM(Cas9)或TTTV PAM(Cas12a)。

  2. 修復模板設計(如需敲入):

    • 同源臂長度:細菌(~500 bp),真菌(~1 kb)。

B. 載體構建

  • 表達系統

    • 質粒載體:適合短期編輯(需抗性篩選)。

    • 染色體整合:穩定表達Cas9(如大腸桿菌BL21(DE3)-Cas9)。

  • 遞送方式

    • 電轉化(細菌)、PEG介導(真菌)、接合轉移(難以轉化的菌種)。

C. 編輯與篩選

  1. 轉化/轉染:將CRISPR組件導入微生物。

  2. 篩選

    • 抗性標記:如卡那m素(KanR)、氯m素(CmR)。

    • 表型篩選:熒光報告基因(GFP)、營養缺陷型補償(如leu2-)。

  3. 驗證

    • PCR+測序:確認目標編輯。

    • 功能驗證:如酶活檢測、生長曲線。


3. 應用領域

A. 基礎研究

  • 基因功能研究:必需基因敲除、啟動子替換。

  • 調控網絡解析:如細菌雙組分系統突變體構建。

B. 工業生物技術

  • 代謝工程

    • 大腸桿菌生產胰島素、琥珀酸。

    • 酵母合成青h素、β-胡蘿卜素。

  • 酶改造:定向進化提高酶熱穩定性(如Taq DNA聚合酶)。

C. 醫學應用

  • 疫苗開發:減毒活疫苗(如刪除致病基因的結核分枝桿菌)。

  • 抗菌策略

    • 編輯益生菌(如乳酸菌)遞送治療分子。

    • 噬菌體編輯靶向耐藥菌(如MRSA)。

D. 環境修復

  • 工程菌:降解污染物(如Pseudomonas編輯降解石油)。


4. 挑戰與解決方案

A. 編輯效率低

  • 優化方案

    • 調整Cas蛋白表達量(避免毒性)。

    • 使用ssDNA修復模板(提高HDR效率)。

B. 遞送困難

  • 解決方案

    • 原生質體轉化(真菌)。

    • 噬菌體包裹CRISPR組件(針對頑固細菌)。

C. 脫靶效應

  • 控制方法

    • 高保真Cas變體(如Cas9-HF1)。

    • 全基因組測序驗證。


5. 前沿技術

  • 多基因編輯:同步敲除/敲入多個基因(如酵母基因組精簡計劃)。

  • 無痕編輯:通過FLP/FRT或Cre-loxP刪除篩選標記。

  • 體內編輯:口服CRISPR膠囊靶向腸道菌群(如治療苯b酮尿癥)。


6. 實驗示例:大腸桿菌基因敲除

  1. 設計sgRNA:靶向lacZ基因(5'-GCTATGACCATGATTACGA-3' + NGG)。

  2. 構建質粒:將sgRNA和Cas9克隆至pTarget載體。

  3. 電轉化:導入大腸桿菌DH5α,涂布Amp平板。

  4. 驗證

    • 藍白斑篩選(lacZ-菌落為白色)。

    • PCR擴增靶區域并測序。

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