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常用啟動子:
αMHC(Myh6):成年心肌細胞特異性表達(胚胎期低表達)。
cTnT(Tnnt2):胚胎期和成年期均高表達。
Nppa(ANF):心力衰竭時激活,可用于病理模型。
過表達模型:將目標基因與心臟啟動子連接(如AAV9載體或轉基因小鼠)。
條件性敲除(cKO):需結合Cre-loxP系統(如αMHC-Cre × floxed基因小鼠)。
條件性激活(如GOI):利用Tet-on/off系統或Cre依賴的激活工具。
克隆心臟啟動子(如αMHC 5.5 kb片段)。
插入目標基因(或sgRNA用于CRISPR編輯)。
添加報告基因(如GFP或LacZ)便于表型驗證。
轉基因小鼠:顯微注射載體至受精卵原核。
基因敲除/敲入:CRISPR-Cas9或ES細胞打靶。
條件性模型:需先獲得floxed小鼠(loxP位點 flanking 目標基因),再與心臟特異性Cre小鼠交配。
基因型鑒定:PCR或測序確認目標基因整合。
表達驗證:qRT-PCR/Western blot檢測心臟特異性表達。
功能評估:超聲心動圖(Echo)、心電圖(ECG)、組織病理學(如Masson染色檢測纖維化)。
解決:驗證啟動子特異性(如分離肝、腦、骨骼肌組織排除泄漏表達)。
優化:使用更嚴格的啟動子(如cTnT比αMHC胚胎期表達更強)。
αMHC-Cre:高表達可能導致心肌肥厚(需選擇低表達品系,如MerCreMer)。
誘導型Cre(如他莫昔芬誘導的Cre-ERT2)可避免發育期影響。
解決:維持遺傳背景一致(如回交至C57BL/6J 10代以上)。
cPM過表達模型:
目標:研究心肌肥厚(如過表達calcineurin)。
方法:αMHC啟動子驅動calcineurin轉基因小鼠。
cPM敲除模型:
目標:研究心臟代謝(如PPARα敲除)。
方法:αMHC-Cre × PPARα-floxed小鼠。
倫理審批:確保實驗符合動物福利規范(如3R原則)。
對照設計:同窩野生型(WT)和雜合子(HET)對照。
表型分析時間點:根據目標疾?。ㄈ缧牧λソ吣P托栝L期隨訪)。
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